Contenido

La asignatura se estructura en 4 tipos de contenidos o módulos.

 

Informática

Las prácticas se organizan en 5 sesiones de 2 h que se hacen en el aula de informática.

Práctica 1 (2h). Introducción al Bash: Primeras instrucciones: ls, cd, pwd, ... Manipulación de ficheros: sistema de directorios / carpetas, redireccionamientos, visualización y ordenación de archivos, ...

Práctica 2 (2h). Manipulación de ficheros: sort, grep y AWK.

Práctica 3 (2h). Introducción a una hoja de cálculo: LibreOffice Calc (I).

Práctica 4 (2h). Introducción a una hoja de cálculo: LibreOffice Calc (II).

Práctica 5 (2h). Aplicación práctica

 

Biología Celular

Las prácticas se organizan en 6 sesiones de 2 h que se hacen en el laboratorio.

Práctica 1 (2h). Introducción al microscopio óptico y observación de células vegetales. Descripción de los elementos del microscopio óptico y fundamentos de utilización del microscopio. Obtención de preparaciones temporales de diferentes muestras de tejidos vegetales (pimiento, Elodea) y observación de la morfología de las células vegetales y de sus principales componentes: pared celular, núcleo, cloroplastos, cromoplastos, plasmodesmos.

Práctica 2 (2h). Observación de células animales al microscopio óptico. Observación de la morfología de diferentes tipos de células animales: células de la mucosa bucal, fibroblastos y espermatozoides.

Práctica 3 (2h). Introducción a la microscopia electrónica. Fundamentos de la microscopía electrónica. Reconocimiento y medida de diferentes estructuras y orgánulos celulares en micrografías de SEM y TEM.

Práctica 4 (2h). Osmosis y difusión simple. Estudio del fenómeno de la ósmosis en células de una hoja de Elodea expuestas a diferentes concentraciones de NaCl. Estudio de la difusión simple de alcoholes a través de la membrana de células de una hoja de Elodea.

Práctica 5 (2h). La división celular mitótica. Obtención de preparaciones temporales de tejidos vegetales para observar y reconocer las diferentes fases de la mitosis y calcular su duración.

Práctica 6 (2h). La división celular meiótica. Observación de las diferentes fases del ciclo meiótico de la espermatogénesis en insectos.

 

Técnicas Instrumentales

Técnicas básicas de trabajo en el laboratorio. Aplicación a la espectrometría.

Práctica 1 (4h). Preparación de un sistema amortiguador de pH. Determinación de la concentración de glucosa por un método colorimétrico. Análisis de un espectro de absorción.

Uso de las técnicas básicas de separación, detección y análisis de proteínas y ácidos nucleicos.

Práctica 2 (4h). Determinación de la concentración de proteína por un método colorimétrico (Bradford). Separación de proteínas por electroforesis en SDS (1ª parte). Amplificación de un gen por PCR, efecto de la concentración de Mg²⁺ (1ª parte).

Práctica 3 (4h). Determinación de las Mr de algunas proteínas mediante la electroforesis SDS (ejemplo: proteínas de la leche). Separación de fragmentos de ADN porelectroforesis en agarosa (identificación de los fragmentos de PCR amplificados como resultado de la práctica 2).

 

Bioquímica

Aplicación de las técnicas básicas para el análisis, purificación y caracterización de biomoléculas.

Práctica 1 (4h). Cromatografía de gel filtración: separación de hemoglobina de la vitamina B12 y del azul dextrano. Proceso de expresión y purificación de una proteína heteróloga: GFP (green fluorescence protein).

Práctica 2 (4h). Continuación del proceso de purificación de la GFP. Cromatografía hidrofóbica: purificación parcial de la proteína GFP de un extracto bacteriano.

Práctica 3 (4h). Identificación de lípidos mediante cromatografía en capa fina. Determinación del pKa del p-nitrofenol y su utilidad para seguir la actividad enzimática de la fosfatasa.

Técnicas básicas de análisis de la actividad enzimática. Estudio de la actividad de la fosfatasa ácida.

Práctica 4 (4h). Aplicación de la espectrometría al análisis de la actividad enzimática. Determinación del pH óptimo de la actividad de una enzima. Determinación del tiempo en que se mantiene la linealidad de la reacción. Obtención de datos de velocidad inicial para la determinación de los parámetros cinéticos KM y Vm de la reacción. Análisis del efecto de un inhibidor en la actividad enzimática.

Práctica 5 (2h). Utilización de herramientas informáticas para determinar el valor de pKa y los parámetros cinéticos. Uso del programa GRAFIT. Determinación delpK del p-nitrofenol a partir delos datos obtenidos en la práctica 3. Determinación de los parámetros cinéticos, KM y Vm, a partir de los datos obtenidos en la práctica 4. Determinación del tipo de inhibición y de las correspondientes constantes de inhibición a partir de los datos obtenidos en la práctica 4.